Unité Mixte
de Recherche

Biologie et Génétique
des Interactions Plante-Parasite

 

 

 

CIRAD
UMR-BGPI TA A-54/K
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de Baillarguet
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FRANCE


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Equipe 2 : Interactions Virus Insecte Plante (VIP) Thématique de recherche
 
La biologie énigmatique des virus multipartites
Responsable: Stéphane Blanc
 

Le cycle de vie des virus multipartites est très mal compris et pose un certain nombre de problèmes conceptuels. Sur la base de l’étude d’un Nanovirus comme espèce modèle, ce projet vise à élucider expérimentalement les bases de la biologie de ces systèmes viraux, en caractérisant les coûts et bénéfices spécifiques de leur organisation génomique si particulière.

Personnel impliqué dans le projet

S. Blanc
Chercheur
Responsable du projet
M. Yvon
Technicien
M.S. Vernerey
Ingénieure
G. Gallet
Post-doc
J. Di Mattia
Doctorant

J.L. Zeddam
Chercheur

E. Pirolles
Assistant Ingénieur
   
Etudiants Master
• Anne Sicard (Printemps 2010, M2 SupAgro., Montpellier, France)
• Geoffrey Carpentier (Printemps 2014, M2 univ. Montpellier, France)
• Alexander Dale (Hiver 2015, Master 1 Erasmus, Oxford, United Kingdom)
• Elise Découvreur (Printemps 2015, Master 1 Erasmus, Univ. Louvain, Belgium)
• Jules Butchacas (Hiver-Printemps 2016 Master 1 IMHE Université Montpellier)
• Isabelle Russel (Printemps 2017, Master 1 Erasmus MEME, Université de Montpellier)
• Mark Wright (Printemps 2017, Master 1 Erasmus MEME, Université de Montpellier)
• Abdillah Mohamed (Hiver-Printemps 2017 Master 2 IMHE Université Montpellier)
• Jérémy Dimattia (Hiver-Printemps 2017 Master 2 IMHE Université Montpellier)
• Yahya Gafaar (automne hiver 2017, visiteur Doctorant JKI institute Brunschweig, Allemagne)

Principale collaboration
Yannis Michalakis (Directeur de Recherche, CNRS, Montpellier)

 

Projet de recherche


Contexte scientifique du projet de recherche

Trois grandes catégories d’organisation de la structure des génomes viraux peuvent être distinguées, indépendamment du fait qu’il s’agisse de virus à ADN ou ARN. Les virus “monopartites” ont un seul chromosome qui porte la totalité de l’information génétique, encapsidé dans une particule virale unique. Les virus « segmentés » possèdent plusieurs chromosomes qui sont tous encapsidés ensembles dans une particule virale unique. Enfin, les virus « multipartites » ont aussi plusieurs chromosomes (de 2 à 10 suivant les espèces), mais qui sont encapsidés individuellement dans des particules virales distinctes. Les virus multipartites sont très fréquents chez les plantes, où ils sont responsables de maladies de nombreuses cultures partout dans le monde. Ils sont aussi fréquents chez les champignons et ont récemment été décrits chez certains insectes.

Du fait de la compartimentation de l’information génétique dans des particules virales distinctes, le fonctionnement du génome des virus multipartites est intimement lié à celui de leurs populations. Des approches théoriques ont prédit des avantages pour de tels systèmes biologiques, comme par exemple une plus grande stabilité, une réplication plus rapide et des échanges génétiques accrus pour cet ensemble de segments génomiques. Les inconvénients seraient eux liés à une très faible probabilité d’infecter une nouvelle cellule ou un nouvel hôte avec au moins une copie de chaque segment pour ne pas perdre d’information. Cette vision souffre malheureusement du manque flagrant de données expérimentales pour illustrer ces avantages théoriques, et même les coûts qui paraissent si évidents.



Modèle biologique et résultats

Nous avons démontré que le Faba bean necrotic stunt virus (FBNSV, Famille Nanoviridae) contrôle la fréquence relative de chacun de ses huit segments génomiques de manière très reproductible, certains segments étant toujours fréquents et d’autres rares (Figures 1 et 2). Le pattern des fréquences des huit segments ainsi obtenu durant l’infection d’une plante est dénommé « formule génomique » (pour des figures illustratives, cf la version Anglaise du site). Cette découverte révèle un avantage potentiel dans ces systèmes multipartites, qui serait la capacité de contrôler spécifiquement le nombre de copies de chacun des gènes viraux et ainsi contrôler moduler leur expression. En corolaire, ce contrôle spécifique de la fréquence des segments engendre une situation de coût maximum, notamment liée à une chance accrue de perdre les segments rares.

Figure 1: Genome organization of nanoviruses on the example of Faba bean necrotic stunt virus (FBNSV). Eight segments are circular ssDNAs each around 1000 bases : R encodes : Master-Rep assisting replication of all segments, S : coat protein CP separately encapsidating all segments, C : Clink resetting cell cycle, M : movement protein MP mediating in-plant virus migration, N : nuclear shuttle protein NSP regulating aphid transmission (B. Gronenborn, pers. com.), U1-U2-U4 have unknown functions. CR-SL: common region stem loop.
Figure 2 : Gene Copy Number regulation in Nanoviruses
Left Panel
The relative frequency of each FBNSV segment in Vicia faba plants systemically infected after inoculation by aphid vectors is plotted in dark blue and compared to that in agro-inoculated plants (light blue on the left). In Vicia faba, the frequency of the segments was not affected by the mode of inoculation (aphid- versus agro-inoculation), as indicated by ANOVA tests for each of the eight segments. The relative frequency of FBNSV segments in Medicago truncatula plants systemically infected after inoculation by aphid vectors is plotted in red. Vf-At1, Vf-At2, Vf-At3, Mt-At1 and Mt-At2 results from independent aphid-inoculation experiments and the number of infected plants in each set (n) is indicated on the right. A significant effect of the host species could be detected through ANOVA tests for 7 out of 8 segments. (From Sicard et al 2013)

 
Right Panel
The genome formulae of FBNSV in Vicia faba (GF Vf) and in Medicago truncatula (GFMt) were respectively calculated by pooling all Vf-At and Mt-At data sets, and are indicated below the graph.
The relative frequency of the segments (segment name below panels) was estimated by qPCR. The rarest is arbitrarily considered as 1 copy, and the copy number of the others is represented relative to it. Genome formula in Vicia faba (V.f. green left), Medicago truncatula (M.t. blue center) and Acyrtosiphon pisum (A.p. grey right). Adapted from Sicard et al 2013 and Sicard et al 2015.

Les questions de notre programme de recherche


Nous développons un programme de recherche expérimental pour étudier les relations entre les fréquences relatives des différents segments génomiques, l’expression des gènes et des phénotypes viraux, et l’adaptation de ces systèmes à un environnement changeant (hôtes et vecteurs différents) sur le modèle Faba bean necrotic stunt virus (FBNSV, genre Nanovirus, famille Nanoviridae). Les questions qui nous intéressent en premier lieu sont :

i) Le lien entre la formule génomique et la régulation de l’expression des gènes et des phénotypes viraux (accumulation, agressivité, transmission par pucerons vecteurs)

ii) La distribution des différents segments génomiques au niveau cellulaire, de manière à vérifier si tous les segments doivent obligatoirement être ensembles dans chaque cellule infectée, ou bien si ils peuvent être temporairement séparés à certaines étapes du cycle viral, dans la plante ou le vecteur (Figure 3).

Figure 3 : Localization of distinct genome segments in host plant and aphid vector cells
The fluorescent labeling of pairs of segments (here U2-red and U4-green) demonstrates that the segments do not necessarily localize together in individual cells of the host plant where the virus replicates (left). This suggests that the multipartite viral systems can be functional when distinct genes accumulate in distinct cells and thus that the system coordinates across distinct cells in a tissue, defining a pluricellular way of life. In sharp contrast, in the gut cells of insect vectors (right), the virus does not replicate and undergoes massive transcytosis to traverse the cellular gut barrier. We observe countless cytoplasmic granules, each containing all segments of the tested pairs. This illustrates a very intriguing counterintuitive situation where all segments accumulate together in cells where no viral replication occurs (aphid gut cells), whereas they accumulate separately in distinct cells where the virus replicates (plant cells). Both images show merged green and red channels, and colocalization appears yellow. Nucleus are DAPI-stained.
(Unpublished results)

iii) Le mouvement des segments génomique ADNss, ainsi que celui des ARNm correspondants et des protéines, afin de tester si la complémentation fonctionnelle entre les différents segments ne peut se faire qu’à l’intérieur d’une même cellule ou bien si elle peut aussi se faire à distance, à partir de cellules différents.

iv) La plasticité de la formule génomique en réponse à des changements de l’environnement du virus, et l’évolution de cette formule durant l’adaptation à une nouvelle espèce hôte.

v) La formule génomique à une échelle supérieure, la distribution et la circulation des segments génomiques de plusieurs espèces de nanovirus en condition naturelle, dans un réseau complexe d’espèces de plantes hôtes et de pucerons vecteurs. Ici aussi une hypothèse forte est que les différents segments du génome viral ne circulent pas nécessairement toujours ensembles dans ce réseau, et donc dans le paysage.

Ce projet apporte (et apportera) des informations cruciales sur la biologie des virus multipartites. En particulier, les résultats attendus procurent un éclairage nouveau sur les bénéfices et les coûts possibles dans ces systèmes, pour lesquels plusieurs décennies d’études théoriques ont amené à la conclusion que le cadre conceptuel classique de virologie ne permet pas d’expliquer l’existence.

Notre objectif à long terme est de promouvoir ce programme dans une large communauté de Virologistes, au delà des virus de plantes, et de susciter un effort de recherche accru sur l’ensemble des systèmes viraux multicomposants.

Ce projet apporte (et apportera) des informations cruciales sur la biologie des virus multipartites. En particulier, les résultats attendus procurent un éclairage nouveau sur les bénéfices et les coûts possibles dans ces systèmes viraux, pour lesquels plusieurs décennies d’études théoriques ont amené à la conclusion que le cadre conceptuel classique de virologie ne permet pas d’expliquer l’existence.


Financement

Ce projet est actuellement financé par l’INRA département SPE et par l’ANR (projet ANR-nano)

Nous essayons d’agréger d’autres financements externes afin de développer un programme plus ambitieux, pour atteindre l’objectif à long terme mentioné ci-dessus.


Liste des publications du responsable: Stéphane Blanc (*Corr. author)

En prévision :

-Blanc S and Y Michalakis (editors). « Multicomponent viral systems ». We are preparing and will edit a full section comprising 16 complementary review articles each related to the topic. Current Opinion in Virology 2019.

-Gallet R, Fabre F, Thébaud G, Blanc S and Y Michalakis. Small bottleneck size in Faba bean necrotic stunt virus populations during aphid transmission and plant colonization. Manuscript in preparation.

-Sicard A, Pirolles E., Gallet R, Vernerey M-S, Yvon M, Urbino C, Peterschmitt M, Michalakis Y and S Blanc*. A pluricellular way of life for a multipartite virus. Manuscript in preparation

-Yvon M, Wright M, Michalakis Y and S Blanc*. A plant virus induces a switch in the investment of its insect vector from fecundity to survival in the absence of ressources. Manuscript in preparation

-Webster C, van Munster M, Monsion B, Gargani D, Hoh F, Barthe P, Padilla A, Bron P, Blanc S and M Uzest. Identification of plant virus receptor candidates in the stylets of aphid vectors. Manuscript in preparation

2017
-Gallet* R, Fabre F, Michalakis Y, and S Blanc* (2017). The number of target molecules of amplification step limits accuracy and sensitivity in ultradeep-sequencing viral population studies. J. Virol 2016, doi:10.1128/JVI.00561-17

-van Munster M, Yvon M, Vile D, Dader B, Fereres A and S Blanc*. Water deficit enhances the transmission of plant viruses bu insect vectors. PLoS One 2017, 3;12(5). Doi:10.1371/journal .pone0174398. eCollection2017

-Yvon M, Vile D, Brault V, Blanc S and M van Munster. Drought reduces transmission of turnip yellows virus, an insect-vectored circulative virus. Virus research 2017, doi: 10.1016/j.virusres.2017.07.009

-Webster C, Thillier M, Priolles E, Cayrol B, Blanc S and M Uzest. Proteomic composition of the acrostyle: Novel approaches to identify cuticular proteins involved in virus-insect interactions. Insect Science 2017,

2016
- Sicard A, Michalakis Y, Gutierrez S and S Blanc*. The strange lifestyle of multipartite viruses. PLoS Pathog 2016, 12(11): e1005819.

- Stéphane Blanc* and Yannis Michalakis : Manipulation of hosts and vectors by plant viruses and impact of the environment. Current Opinion in Insect Science 2016, 16:36–43. doi.org/10.1016/j.cois.2016.05.007

- Blanc* S. & M. Uzest. Non-circulative virus-vector interactions, In «Microbe-Arthropod vector interactions» 2016, ed J. Brown, American Phytopathological Society Press.

2015
-Roumagnac P, Granier M, Bernardo P, Deshoux M, Ferdinand R, Galzi S, Fernandez E, Julian C, Abt I, Filloux D, Varsani A, Blanc S, Martin DP and M. Peterschmitt: Alfalfa leaf curl virus: An pahid transmitted geminivirus. J Virol 2015, 89:9683–9688. doi:10.1128/JVI.00453-15.

-Sicard A, Zeddam JL, Yvon M, Michalakis Y, Gutierrez S, Blanc* S: Circulative non propagative aphid-transmission of nanoviruses: an oversimplified view. J Virol 2015, 89:9719 –9726. doi:10.1128/JVI.00780-15..

- Gutiérrez S, Pirolles E, Yvon M, Baecker V, Michalakis Y and S Blanc*: The multiplicity of cellular infection changes depending on the route of cell infection in a plant virus. J Virol 2015, 89:9665–9675. doi:10.1128/JVI.00537-15

- Blanc* S and S Gutiérrez: The specifics of vector transmission of arboviruses of vertebrates and plants. Current Opinion in Virology 2015, 15:27–33, doi.org/10.1016/j.coviro.2015.07.003

2014
-Blanc* S, Drucker M, Uzest M: Localizing viruses in their insect vectors. Annu Rev Phytopathol 2014, 52:403-425.

2013
-Bak A, Gargani D, Macia JL, Malouvet E, Vernerey MS, Blanc S, Drucker M: Virus factories of cauliflower mosaic virus are virion reservoirs that engage actively in vector transmission. J Virol 2013, 87:12207-12215.

-Gutiérrez S, Michalakis Y, Van Munster M, Blanc* S: Plant feeding by insect vectors can affect life cycle, population genetics and evolution of plant viruses. Functional Ecology 2013, 27:610-622.

-Martiniere A, Bak A, Macia JL, Lautredou N, Gargani D, Doumayrou J, Garzo E, Moreno A, Fereres A, Blanc* S and M. Drucker*: A virus responds instantly to the presence of the vector on the host and forms transmission morphs. Elife 2013, 2:e00183.

-Sicard A, Yvon M, Timchenko T, Gronenborn B, Michalakis Y, Gutierrez S, Blanc* S: Gene copy number is differentially regulated in a multipartite virus. Nature Commununications 2013, 4:2248. doi: 10.1038/ncomms3248

2012
-Gutierrez S, Michalakis Y, Blanc* S: Virus population bottlenecks during within-host progression and host-to-host transmission. Curr Opin Virol 2012, 2:546-555.

-Gutierrez S, Yvon M, Pirolles E, Garzo E, Fereres A, Michalakis Y, Blanc* S: Circulating virus load determines the size of bottlenecks in viral populations progressing within a host. PLoS Pathog 2012, 8:e1003009.

-Bak A, Irons SL, Martiniere A, Blanc S, Drucker M: Host cell processes to accomplish mechanical and non-circulative virus transmission. Protoplasma 2011, 249 :529-539

2011
-Blanc* S, Uzest M and M Drucker. New research horizon in vector-transmission of plant viruses. Current Opinion in Microbiology 2011, 14 :483-491

-Blanc* S, Drucker M: Functions of virus and host factors during vector-mediated transmission. In Recent Advances in Plant Virology. Edited by Caranta C, Aranda MA, Tepfer M, Lopez-Moya JJ: Caister Academic Press; 2011:103-120.

-Martiniere A, Macia JL, Bagnolini G, Jridi C, Bak A, Blanc S, Drucker M: VAPA, an Innovative "Virus-Acquisition Phenotyping Assay" Opens New Horizons in Research into the Vector-Transmission of Plant Viruses. PLoS One 2011, 6:e23241.

-Vuillaume F, Thebaud G, Urbino C, Forfert N, Granier M, Froissart R, Blanc S, Peterschmitt M: Distribution of the phenotypic effects of random homologous recombination between two virus species. PLoS Pathog 2011, 7:e1002028.

2010
-Brault V, Uzest M, Monsion B, Jacquot E, Blanc S: Aphids as transport devices for plant viruses. C R Biol 2010, 333:524-538.

-Gutierrez S, Yvon M, Thebaud G, Monsion B, Michalakis Y, Blanc* S: Dynamics of the multiplicity of cellular infection in a plant virus. PLoS Pathog 2010, 6(9): e1001113

-Hoh F, Uzest M, Drucker M, Plisson-Chastang C, Bron P, Blanc S, Dumas C: Structural insights into the molecular mechanisms of cauliflower mosaic virus transmission by its insect vector. J Virol 2010, 84:4706-4713.

-Khelifa M, Masse D, Blanc S, Drucker M: Evaluation of the minimal replication time of Cauliflower mosaic virus in different hosts. Virology 2010, 396:238-245.

-Uzest M, Gargani D, Dombrovsky A, Cazevieille C, Cot D, Blanc* S: The "acrostyle": a newly described anatomical structure in aphid stylets. Arthropod Struct Dev 2010, 39:221-229.

2009
-Martinière A, Gargani D, Uzest M, Lautredou N, Blanc S, Drucker M: A Role for Plant Microtubules in the Formation of Transmission-specific inclusion bodies of Cauliflower mosaic virus. Plant J 2009, 58:135-146.

-Yvon M, Monsion B, Martin JP, Gutiérrez S, Blanc* S: PCR-based amplification and analysis of specific viral sequences from individual plant cells. Journal of Virological Methods 2009, doi:10.1016/j.jviromet.2009.04.016

2008
-Blanc* S: Vector transmission of plant viruses. In Encyclopedia of Virology, edn 3rd. Edited by Mahy BWJ, van regenmortel MHV: Elsevier Ltd.; 2008:274-282.

-Monsion B, Duborjal H, Blanc* S: Quantitative Single-letter Sequencing: a method for simultaneously monitoring numerous known allelic variants in single DNA samples. BMC Genomics 2008, 9:85.

-Monsion B, Froissart R, Michalakis Y, Blanc* S: Large bottleneck size in Cauliflower Mosaic Virus populations during host plant colonization. PLoS Pathog 2008, 4:e1000174.

-Urbino C, Thebaud G, Granier M, Blanc S, Peterschmitt M: A novel cloning strategy for isolating, genotyping and phenotyping genetic variants of geminiviruses. Virol J 2008, 5:135.

2007
-Blanc* S: Virus transmission-getting out and in., vol 7. Edited by Heinlein EWaM. Berlin-Heidelberg: Springer-Verlag; 2007.

-Brault V, Blanc S, Jacquot E: Comment les pucerons transmettent des maladies virales aux plantes. Biofutur 2007, 279:40-44.

-Khelifa M, Journou S, Krishnan K, Gargani D, Esperandieu P, Blanc S, Drucker M: Electron-lucent inclusion bodies are structures specialized for aphid transmission of cauliflower mosaic virus. J Gen Virol 2007, 88:2872-2880.

-Uzest M, Gargani D, Drucker M, Hebrard E, Garzo E, Candresse T, Fereres A, Blanc* S: A protein key to plant virus transmission at the tip of the insect vector stylet. Proc Natl Acad Sci U S A 2007, 104:17959-17964.

2006
-Jridi C, Martin JF, Marie-Jeanne V, Labonne G, Blanc* S: Distinct viral populations differentiate and evolve independently in a single perennial host plant. J Virol 2006, 80:2349-2357.

2005
-Ballut L, Drucker M, Pugniere M, Cambon F, Blanc S, Roquet F, Candresse T, Schmid HP, Nicolas P, Gall OL, et al.: HcPro, a multifunctional protein encoded by a plant RNA virus, targets the 20S proteasome and affects its enzymic activities. J Gen Virol 2005, 86:2595-2603.

-Froissart R, Roze D, Uzest M, Galibert L, Blanc S, Michalakis Y: Recombination every day: abundant recombination in a virus during a single multi-cellular host infection. PLoS Biol 2005, 3:e89.

-Moreno A, Hebrard E, Uzest M, Blanc* S, Fereres A: A single amino acid position in the helper component of cauliflower mosaic virus can change the spectrum of transmitting vector species. J Virol 2005, 79:13587-13593.

-Plisson C, Uzest M, Drucker M, Froissart R, Dumas C, Conway J, Thomas D, Blanc S, Bron P: Structure of the mature P3-virus particle complex of cauliflower mosaic virus revealed by cryo-electron microscopy. J Mol Biol 2005, 346:267-277.

2004
-Blanc* S: Insect transmission of viruses. In Microbe-vector interactions in vector-borne diseases. Edited by Gillespie SH, Smith GL, Osbourn A: Cambridge University Press; 2004:42-61. [Symposium S (Series Editor), vol 63.]

-Froissart R, Uzest M, Ruiz-Ferrer V, Drucker M, Hebrard E, Hohn T, Blanc* S: Splicing of Cauliflower mosaic virus 35S RNA serves to downregulate a toxic gene product. J Gen Virol 2004, 85:2719-2726.

2003
-Plisson C, Drucker M, Blanc S, German-Retana S, Le Gall O, Thomas D, Bron P: Structural characterization of HC-Pro, a plant virus multifunctional protein. J Biol Chem 2003, 278:23753-23761.

2002
-Drucker M, Froissart R, Hebrard E, Uzest M, Ravallec M, Esperandieu P, Mani JC, Pugniere M, Roquet F, Fereres A, and S Blanc* : Intracellular distribution of viral gene products regulates a complex mechanism of cauliflower mosaic virus acquisition by its aphid vector. Proc Natl Acad Sci U S A 2002, 99:2422-2427.

-Drucker M, German-Retana S, Espérandieu P, Le Gall O, Blanc* S: Purification of a viral protein from infected plant tissues using the strep tag II affinity tag. BioTech Intl. 2002, 14:16-18.

-Froissart R, Michalakis Y, Blanc* S: Helper component-transcomplementation in the vector transmission of plant viruse. Phytopathology 2002, 92:576-579.

-Lett JM, Granier M, Hippolyte I, Grondin M, Royer M, Blanc S, Reynaud B, Peterschmitt M: Spatial and temporal distribution of geminiviruses in leafhoppers of the genus Cicadulina monitored by conventional and quantitative polymerase chain reaction. Phytopathology 2002, 92:65- 74.

-Palacios I, Drucker M, Blanc S, Leite S, Moreno A, Fereres A: Cauliflower mosaic virus is preferentially acquired from the phloem by its aphid vectors. J Gen Virol 2002, 83:3163-3171.

2001
-Blanc* S, Hébrard E, Drucker M, Froissart R: Molecular basis of vector transmission : Caulimoviruses. In Virus-Insect-Plant interactions. Edited by Harris K, Smith OP, Duffus JE: Academic Press; 2001:143-166.

-Hebrard E, Drucker M, Leclerc D, Hohn T, Uzest M, Froissart R, Strub JM, Sanglier S, van Dorsselaer A, Padilla A, C. Dumas and S Blanc* : Biochemical characterization of the helper component of Cauliflower mosaic virus. J Virol 2001, 75:8538-8546.

-Leh V, Jacquot E, Geldreich A, Haas M, Blanc S, Keller M, Yot P: Interaction between the open reading frame III product and the coat protein is required for transmission of cauliflower mosaic virus by aphids. J Virol 2001, 75:100-106.

-Raccah B, Huet H, Blanc S: Potyviruses. In Virus-Insect-Plant interactions. Edited by Harris K, Duffus JE, Smith OP: Academic Press; 2001:181-206.

2000
-Héricourt F, Blanc S, Redeker V, Jupin I: Evidence for phosphorylation and ubiquitinylation of turnip yellow mosaic virus RNA-dependent RNA polymerase domain expressed in a baculovirus-insect cell system. Biochem. J. 2000, 349:417-425.

1999
-Blanc S, Dolja VV, Llave C, T.P. P: Histidine-tagging and purification of tobacco etch potyvirus helper component protein. Journal of Virological Methods 1999, 77:11-15.

-Hébrard E, Froissart R, Louis C, Blanc* S: Les modes de transmission des virus phytopathogènes par vecteurs. Virologie 1999, 3:35-48.

-Leh V, Jacquot E, Geldreich A, Hermann T, Leclerc D, Cerutti M, Yot P, Keller M, Blanc* S: Aphid transmission of cauliflower mosaic virus requires the viral PIII protein. Embo J 1999, 18:7077-7085.

1998
-Blanc S, Ammar ED, Garcia-Lampasona S, Dolja VV, Llave C, Baker J, Pirone TP: Mutations in the potyvirus helper component protein: effects on interactions with virions and aphid stylets. J Gen Virol 1998, 79 ( Pt 12):3119-3122.

1997
-Blanc S, Lopez-Moya JJ, Wang R, Garcia-Lampasona S, Thornbury DW, Pirone TP: A specific interaction between coat protein and helper component correlates with aphid transmission of a potyvirus. Virology 1997, 231:141-147.

1996
-Blanc S, Schmidt I, Vantard M, Scholthof HB, Kuhl G, Esperandieu P, Cerutti M, Louis C: The aphid transmission factor of cauliflower mosaic virus forms a stable complex with microtubules in both insect and plant cells. Proc Natl Acad Sci U S A 1996, 93:15158-15163.

-Pirone TP, Blanc S: Helper-dependent vector transmission of plant viruses. Annu Rev Phytopathol 1996, 34:227-247.

1995
-Kiss-Laszlo Z, Blanc S, Hohn T: Splicing of cauliflower mosaic virus 35S RNA is essential for viral infectivity. Embo J 1995, 14:3552-3562.

1994
-Schmidt I, Blanc S, Esperandieu P, Kuhl G, Devauchelle G, Louis C, Cerutti M: Interaction between the aphid transmission factor and virus particles is a part of the molecular mechanism of cauliflower mosaic virus aphid transmission. Proc Natl Acad Sci U S A 1994, 91:8885-8889.

1993
-Blanc S, Cerutti M, Chaabihi H, Louis C, Devauchelle G, Hull R: Gene II product of an aphid-nontransmissible isolate of cauliflower mosaic virus expressed in a baculovirus system possesses aphid transmission factor activity. Virology 1993, 192:651-654.

-Blanc S, Cerutti M, Usmany M, Vlak JM, Hull R: Biological activity of cauliflower mosaic virus aphid transmission factor expressed in a heterologous system. Virology 1993, 192:643-650.

-Blanc S, Schmidt I, Kuhl G, Esperandieu P, Lebeurier G, Hull R, Cerutti M, Louis C: Paracrystalline structure of cauliflower mosaic virus aphid transmission factor produced both in plants and in a heterologous system and relationship with a solubilized active form. Virology 1993, 197:283-292.

 
asques et ascospores de Magnaporthe orizae - copyright : JL Notteghem spores Magnaporthe oryzae - copyright : JL Notteghem bactéries Xanthomonas pseudoalbilineans (gauche) et Xanthomonas albilineans (droite). Les deux produisent l'antibiotique albicidine (structure en haut de la photo - copyright : S. Cociancich/A. Mainz
  champignon Magnaporthe (vert) en train d'attaquer une feuille de riz - copyright : A. Delteil/JB Morel test d'anticorps sur puceron (Mysus persicae) - copyright : MS Vernerey/M. van Munster/M. Uzest